Кровь с цитратом что это

Скорость оседания эритроцитов. Современные методы определения и клиническая интерпретация

Кровь с цитратом что это

14.11.2019

Аптинов М.М. – руководитель учебного центра компании West Medica

Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) – показатель, определение которого входит в общий анализ крови. Это неспецифический лабораторный скрининговый тест, изменение которого может служить косвенным признаком текущего воспалительного или иных патологических процессов, таких как злокачественные опухоли и диффузные заболевания соединительной ткани.

Скорость оседания эритроцитов определяют в разведенной цитратом крови за определенный промежуток времени (1час) и выражают в мм за 1 час.Значение СОЭ определяют как расстояние от нижней части поверхностного мениска (прозрачная плазма) до верхней части осевших эритроцитов в вертикальном столбце стабилизированной цитратом цельной крови.

Удельная масса эритроцитов выше, чем удельная масса плазмы, поэтому в пробирке при наличии антикоагулянта (цитрата натрия) под действием силы тяжести эритроциты оседают на дно. Процесс оседания (седиментации) эритроцитов можно разделить на 3 фазы, которые происходят с разной скоростью:

  • Первая фаза:медленное оседание отдельных эритроцитов.
  • Вторая фаза:образование агрегатов эритроцитов (т.н. “монетные столбики”), ускорение оседания.
  • Третья фаза:образование множества агрегатов эритроцитов и их «упаковка», оседание замедляется и постепенно прекращается.

Показатель СОЭ меняется в зависимости от множества физиологических и патологических факторов. Значения СОЭ у женщин несколько выше, чем у мужчин. Изменения белкового состава крови при беременности ведут к повышению СОЭ в этот период.

Снижение содержания эритроцитов в крови (анемия) приводит к ускорению СОЭ и, напротив, повышение содержания эритроцитов в крови замедляет скорость седиментации.

В течение дня возможно колебание значений, максимальный уровень отмечается в дневное время.

Основным фактором, влияющим на образование “монетных столбиков” при оседании эритроцитов является белковый состав плазмы крови.

Острофазные белки, адсорбируясь на поверхности эритроцитов, снижают их заряд и отталкивание друг от друга, способствуют образованию монетных столбиков и ускоренному оседанию эритроцитов.

Повышение уровнябелков острой фазы, например, С-реактивного белка, гаптоглобина, альфа-1-антитрипсина и др., при остром воспалении приводит к повышению СОЭ.

При острых воспалительных и инфекционных процессах изменение СОЭ отмечается через 24 ч после повышения температуры и увеличения числа лейкоцитов.

При хроническом воспалении повышение СОЭ обусловлено увеличением концентрации фибриногена и иммуноглобулинов.

Определение СОЭ в динамике, в комплексе с другими тестами, используют в контроле эффективности лечения воспалительных и инфекционных заболеваний.

Методы определения СОЭ

Метод Панченкова

  • Капилляр Панченкова.Стандартный стеклянный капилляр для определения СОЭ: длина – 172 мм; наружный диаметр – 5 мм; диаметр отверстия – 1,0 мм; четкая коричневая градуировка от 0 до 10 см, шаг шкалы – 1,0 мм; верхнее деление шкалы отмечено «0» и буквой «К» (кровь), напротив деления 50 имеется буква «Р» (реактив).
  • Прибор ПР-3 (СОЭ-метр, аппарат Панченкова) –представляет собой пластиковый штатив с гнездами для установки 20 капилляров.
  • Время измерения: один час.

Процедура определения:

  1. Подготовить 5% раствор цитрата натрия и внести на часовое стекло.
  2. Промыть капилляр 5% раствором цитрата натрия.
  3. Произвести забор капиллярной крови в промытый капилляр.
  4. Перенести кровь из капилляра на часовое стекло.
  5. Повторить шаги 3 и 4.
  6. Перемешать кровь с цитратом натрия на часовом стекле и вновь заполнить капилляр.
  7. Установить капилляр в штатив Панченкова. Запустить таймер для каждого капилляра отдельно.
  8. Через 1 час определить СОЭ по высоте столба прозрачной плазмы.

Метод Вестергрена

  • Стандартные размеры капилляра: длина: 300 мм± 1,5 мм;диаметр: 2,55 мм± 0,15 мм
  • Стандартные температура (18-25˚С) и условия (не позже 2 ч после взятия крови).
  • Время измерения: один час.

Процедура определения:

  1. При взятии пробы венозной крови смешать ее с 5% раствором цитрата натрия в соотношении 4+1.
  2. Произвести забор капиллярной крови в капилляр Вестергрена.
  3. Установить капилляр вертикально. Запустить таймер для каждого капилляра отдельно.
  4. Через 1 час определить СОЭ по высоте столба прозрачной плазмы.

Модифицированный метод Вестергрена: Система Ves-matic (Diesse – Италия).

  • Объем пробы: 1 мл венозной крови
  • Пластиковые пробирки (вакуумные и простые)
  • Безопасность оператора (измерение выполняется в закрытых пробирках)
  • Автоматическое перемешивание
  • Измерение за 20 минут (10 минбыстрый режим)
  • Угол наклона пробирки: 18°
  • Температурная коррекция результатов по номограмме Менли
  • Простота использования.
  • Объективность измерения (результат не зависит от оператора).
  • Встроенный термопринтер.

Процедура определения:

  1. Произвести забор венозной крови до метки в пробирку (вакуумную или простую), содержащую раствор цитрата натрия.
  2. Перемешать кровь с цитратом натрия в пробирке.
  3. Установить пробирки в анализатор СОЭ Ves-matic.
  4. Нажать кнопку Test для запуска измерения.
  5. Через 20 (или 10) минут анализатор автоматически определит СОЭ для 10, 20 или 30 проб.

Использование для определения СОЭ анализаторов серии Ves-matic позволяет не только повысить скорость анализа, но и существенно повышает точность полученных результатов, т.к., полностью исключает влияние субъективного фактора на результат определения.

Анализаторы серии Ves-matic, производитель Diesse – Италия

VES-MATIC 20  Стационарный настольный автоматический СОЭ-метр на 20 позиций с перемешиванием проб крови и измерением результатов. Оптимальный прибор для средних и больших лабораторий. Кровь, собранная в специальные пробирки, тщательно перемешивается прибором.

Ротор прибора вращается с заданной скоростью (1 поворот каждые 1,5 с). Посредством цифрового датчика прибор автоматически определяет уровень осаждения эритроцитов, данные рассчитываются и выводятся на принтер и дисплей. Время измерения 20 минут. Производительность: до 60 тестов в час. Память на 3 последних цикла измерения (до 60 тестов).

4 режима измерения. Клавиатура: 12 функциональных клавиш.

Сравнение значений СОЭ (мм/час), определенных двумя методами

Результаты сравнения результатов определения СОЭ методом Панченкова и Вестергрена представлены в Таблице 1 и на Рис. 1-2. Как видно из представленных данных, методы Панченкова и Вестергрена дают сходные результаты лишь в диапазоне нормальных значений СОЭ (рис.1, табл.1). В области высоких значений метод Вестергрена показывает более высокие уровни СОЭ (Табл.1).

Таблица 1. Пример результатов СОЭ у одних и тех же пациентов, определенных методом Панченкова и методом Вестергрена

метод Панченковаметод Вестергрена
22
44
66
88
1010
1415
1617
1820
2022
3035
4050
5065
6080
70100
80120
140
160

Факторы, влияющие на определение СОЭ:

  • Гематокрит
  • Температура анализа
  • Время хранения пробы (не более 4 ч при комнатной температуре)
  • Антикоагулянт (рекомендован цитрат Na)
  • Вертикальность пробирки / капилляра
  • Длина пробирки / капилляра
  • Внутренний диаметр пробирки / капилляра
  • Вязкость плазмы
  • Степень разведения крови (рекомендуемое разведение 1:5)

Таблица 2. Диапазон нормальных значений СОЭ

Группы пациентовЗначение СОЭ, мм/час
метод Панченковаметод Вестергрена
Дети (до 17 лет)4 – 112 – 10
Мужчины(17–50 лет)2 – 102 – 15
(>50 лет)2 – 20
Женщины(17–50 лет)2 – 152 – 20
(>50 лет)2 – 30

Показания к назначению анализа:

  1. Воспалительные заболевания;
  2. Инфекции;
  3. Подозрение на новообразования;
  4. Скрининговое обследование при профилактических осмотрах.

Измерение СОЭ необходимо рассматривать как скрининговый тест, который не имеет специфичности для какого-то определенного заболевания и может использоваться в качестве вспомогательного диагностического теста.

Причины изменения СОЭ

Повышение (ускорение СОЭ):

Физиологическое

  • Пожилой возраст;
  • У женщин во время беременности, менструации, в послеродовом периоде.

Патологическое

  • Воспалительные процессы;
  • Интоксикации;
  • Острые и хронические инфекции (пневмония, остеомиелит, туберкулез, сифилис);
  • Аутоиммунные заболевания (коллагенозы);
  • Инфаркт миокарда;
  • Травмы, переломы костей;
  • Состояние после шока, операционных вмешательств;
  • Анемии, состояние после кровопотери;
  • Заболевания почек (хронический нефрит, нефротический синдром);
  • Злокачественные опухоли;
  • Парапротеинемии (миеломная болезнь, макроглобулинемия Вальденстрема);
  • Гиперфибриногенемия;
  • Прием лекарственных препаратов (эстрогенов, глюкокортикоидов)

Понижение (замедление СОЭ):

  • Голодание, снижение мышечной массы;
  • Прием кортикостероидов;
  • Беременность (особенно 1 и 2 семестр);
  • Вегетарианская диета;
  • Гипергидратация;
  • Миодистрофии.

В России и СНГ для определения СОЭ широко используется метод Панченкова, который имеет ряд недостатков:

  • возможность использовать для анализа только капиллярную кровь,
  • необходимость подготовки антикоагулянта и мытья капилляров,
  • отсутствие автоматических приборов для измерения.
  • субъективность ручного метода

В западных странах в широко используется метод Вестергрена. В 1977 г.

Международный комитет по стандартизации в гематологии (ICSH – InternationalCommitteeforStandardizationinHematology) рекомендовал применение метода Вестергрена по всему миру.

Обычно определение СОЭ производится с помощью автоматических анализаторов, в частности с помощью системы Ves-matic (Diesse, Италия). В России они появились в 2005 году и сталиочень популярными.

Преимущества метода Вестергрена с помощью системы Ves-matic:

  • Сокращение времени анализа в 2 – 6 раз (10 или 20 минут).
  • Точность и объективность (на результат анализа не влияет человеческий фактор).
  • Безопасность – применение стандартных одноразовых пробирок с цитратом натрия (оптимальное соотношение кровь/цитрат). уменьшение контакта с кровью. Нет необходимости мыть капилляры.
  • Удобствои простота выполнения.
  • Стандартизованное перемешивание – количество переворачиваний пробирок – 40 раз.
  • Стандартизация выполнения анализа (коррекция результатов в зависимости от температуры по номограмме Менли).
  • Возможность использования считывателя штрих-кода (ускорение регистрации и устранение ошибок).
  • Возможность подключения к информационной сети.

Литература

  1. Луговская С.А. и др. «Лабораторная гематология», 2006, «Триада», г.Тверь.
  2. InternationalCouncilforStandardizationinHaematology (Expert Panel on Blood Rheology).ICSH recommendations for measurement of erythrocyte sedimentation rate. J Clin Pathol 1993; 46:198 – 203.
  3. Tietz N.W. et al. Clinical Guide to Laboratory Tests, 3rd ed. AACC 1995.
  4. F.C Prischl and J.D. Schwarzmeier. Automated Determination of the Erythrocyte Sedimentation Rate. I. Med. Univ. – Klinik, Lazarettgasse 14, A-1090 Vienna, Austria.

Источник: https://unimed.ru/biblioteka/gematologiya1/skorost-osedaniya-ehritrocitov-sovremennye-metody-opredeleniya-i-klinicheskaya-interpretaciya.html

Преаналитический этап при исследованиях гемостаза

Кровь с цитратом что это

Для исследования системы гемостаза разработаны и полущили широкое распространение высокоточные приборы и надежные лабораторные методы, которые позволяют быстро и эффективно выявить нарушения, приводящие к кровоточивости или тромбозам, однако их воспроизводимость и точность значимо снижаются при несоблюдении правил и условий преаналитического этапа. Взятие образцов крови, транспортировку и их подготовку для исследования системы гемостаза следует рассматривать как важнейшие этапы полущения корректных результатов,

которым должно быть уделено немало внимания в любой лаборатории, выполняющей исследование системы гемостаза.

ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА

Кровь для исследования гемостаза забирают утром натощак по прошествии не менее. 8 ч после последнего приема пищи. Важно, чтобы взятие венозной крови проводилось в спокойном состоянии, поэтому перед венепункцией пациенту рекомендуют посидеть в течение 20-30 мин.

Для получения надежных результатов при исследовании тромбоцитарного гемостаза за день до сдачи анализа пациенту следует избегать стрессов, физических нагрузок, смены режима дня и изменений в питании, приема алкоголя.

Особенно тщательно необходимо соблюдать эти условия при исследовании маркеров активации тромбоцитов (β-тромбоглобулина, тромбоцитарного фактора-4).

Врачу необходимо знать о лекарственных препаратах, которые назначены и вводятся пациент}, поскольку ряд медикаментов способны нарушить агрегацию тромбоцитов или вызвать изменение параметров коагуляции.

В подобных ситуациях часто приходится учитывать лишь антикоагулянтный или антитромбоцита р- ный эффект применяемых лекарственных препаратов, поскольку выявить многие нарушения гемостаза на фоне применения антикоагулянтов или антиагрегантов невозможно.

У пациентов в реанимационном отделении нельзя брать кровь из подключичного катетера, поскольку это наиболее частая причина попадания гепарина в образец крови. У пациентов в отделении гемодиализа нельзя осуществлять забор крови из артериовенозной фистулы.

Однако при некоторых критических состояниях взятие крови в пробирку или вакутейнер из кубитальной вены бывает невозможно из-за снижения давления.

В подобных ситуациях кровь для исследования допустимо взять из подключичного катетера, но при этом следует учитывать, что перечень выполняемых методик будет существенно ограничен вследствие возможного наличия гепарина в образце.

АНТИКОАГУЛЯНТЫ

Цитрат натрия

Цитрат натрия связывает ионы кальция и останавливает реакции свертывания. В качестве антикоагулянта для определения большинства показателей коагуляционного и тромбоцитарного звеньев системы гемостаза следует использовать 0,105-0,109 M раствор лимоннокислого натрия, который готовят растворением 3.

1-3,2 г Na3C6H507х2H2O в 100 мл воды. Этот раствор следует хранить при температуре от +2 до +8 0C не более 48 ч.

При несоблюдении температурного режима в таком растворе развивается микрофлора, вследствие чего концентрация цитрата натрия уменьшается и появляются посторонние примеси, обладающие потенциальной способностью стимулировать тромбоциты и активировать коагуляционные реакции.

При наличии рекомендации фирм-производителей реагентов допустимо применение 0,129 M (3,8%) цитрата натрия, однако следует учитывать, что разные концентрации стабилизатора по-разному влияют на ряд показателей коагуляции, в том числе и на МНО. Такое влияние особенно заметно при сравнении реагентов разных производителей.

Этилендиаминтетраацетат

ЭДТА также связывает кальций, останавливая свертывание.

Соли этилендиа- минтетраацетата используют для стабилизации образцов, предназначенных для определения клеточного состава периферической крови на гематологических анализаторах.

K2-, K3- и Na2-соли ЭДТА в концентрации 1,2-2,0 мг/мл применяют также при дальнейшем исследовании методами ИФА и ПЦР. Недопустимо использование ЭДТА для исследования коагуляции и функциональной способности тромбоцитов.

Гепарин

Гепарин активирует плазменный антитромбин, который необратимо связывает ферментные факторы свертывания.

Этот антикоагулянт традиционно применяют в ИФА; как правило, для стабилизации крови необходимо от 12 до 30 ЕД/мл натриевой, калиевой или литиевой соли нефракционированного гепарина.

При получении плазмы для исследования ее коагуляционных свойств и функциональной способности тромбоцитов этот антикоагулянт применять нельзя.

ПРОБИРКИ

При взятии и подготовке образцов крови для исследования гемостаза следует применять меры для предупреждения активации тромбоцитов и коагуляционных реакций. Для образцов крови нельзя использовать обычные стеклянные пробирки. поскольку стекло активирует коагуляцию и сорбирует коагуляционные факторы.

В течение многих лет для предупреждения этих эффектов использовали силиконирование пробирок, однако появились сведения о недостаточной способности некоторых силиконов предупреждать активацию тромбоцитов. Кроме того, эта процедура трудно стандартизируется и занимает дополнительное время.

Как альтернативу силиконированию следует использовать пластиковые пробирки, однако различные сорта пластика также разнятся по способности активировать коагуляционные реакции.

Хорошие результаты дает использование вакуумных систем для взятия крови, содержащих забуференный 3,2% раствор цитрата натрия (буферизация чаще достигается добавкой лимонной кислоты).

Цветовая кодировка по ISO/DIS 6710 для вакуумных систем, содержащих цитрат натрия, предусматривает светло- голубой или зеленый цвет колпачков; для пробирок с ЭДТА — лиловый или красный; для пробирок с гепарином — зеленый или оранжевый.

Существуют данные о хороших результатах использования специальных CTAD-систем (со стабилизатором, включающим цитрат натрия, трифосаденин, теофиллин и дипиридамол) для определения β-тромбоглобулина, тромбоцитарного фактора-4, PAI-1, контроля гепаринотерапии по АЧТВ или анти-Ха, определения МНО. Однако этот стабилизатор непригоден для исследования функциональной способности тромбоцитов.

ОПТИМАЛЬНОЕ СООТНОШЕНИЕ ЦИТРАТ/КРОВЬ

Поскольку большинство факторов свертывающей системы содержится в плазме, но не в эритроцитах, необходимое количество антикоагулянта зависит от показателя гематокрита у пациента.

Для стабилизации образцов крови при значении гематокрита в нормальном диапазоне (от 35 до 50%) принято смешивать один объем 3,2% раствора цитрата натрия с девятью объемами крови.

При отклонениях гематокрита от указанных величин следует изменить это соотношение в соответствии с формулой Ingram:

X = V × (100 – НСТ) / (595 – НСТ),

где X — добавляемый объем 3,2% цитрата, мл; V — конечный объем пробирки для крови, мл; HCT — показатель гематокрита у пациента, %.

ТЕХНИКА ВЕНЕПУНКЦИИ

ИГЛА И ПРОБИРКА

Для получения образцов венозной крови необходимо привлекать наиболее опытных и квалифицированных процедурных медсестер, способных в течение нескольких секунд пунктировать вену с наименьшими травматичностью и болезненностью для пациента.

Медсестре необходимо внимательно ознакомиться с направлением на исследование, выбрать пробирки, определить корректную последовательность их наполнения, промаркировать их и указать время взятия крови.

В некоторых специализированных лабораториях на время взятия крови в помощь процедурной медсестре направляют лабораторного техника, что позволяет значительно увеличить пропускную способность процедурного кабинета, снизить вероятность ошибок дозирования цитрата при сдвигах гематокрита и неточностей маркировки проб.

Образец крови предпочтительнее брать из кубитальной вены; место прокола обрабатывают 70% спиртом и дают высохнуть. Допустимо лишь кратковременное (не более 60 с) наложение жгута на плечо, поскольку при венозном стазе происходит активация фибринолиза; после введения иглы в вену жгут тотчас же расслабляют или удаляют.

Наилучшие результаты (с учетом травматичности, болезненности, универсальности, скорости наполнения пробирок) дает использование иглы с калибром 21G. Желательно не брать для исследования гемостаза первые 2-3 мл крови, поэтому их набирают в пробирку без антикоагулянта и используют, например, для получения сыворотки (биохимические, иммунологические тесты и др.).

Далее пластиковые или силиконированные пробирки с предварительно добавленным цитратом наполняют кровью из иглы самотеком, сразу же закрывают и перемешивают путем 4-6-кратного переворачивания или вращения (без встряхивания).

В связи с использованием игл увеличенного диаметра после венепункции в большинстве ситуаций руку пациента необходимо перебинтовать 2- 4 оборотами бинта, приложив к месту прокола марлевый тампон с 70% спиртом.

Наполнять пробирки с цитратом с помощью шприцев для инъекций нельзя, поскольку при насасывании крови и ее последующем переносе в пробирку происходит активация тромбоцитов и коагуляционных факторов вследствие контакта крови с пластиком шприца и дополнительного вспенивания, обусловленного турбулентным движением крови в шприце.

СПЕЦИАЛИЗИРОВАННЫЕ ВАКУУМНЫЕ СИСТЕМЫ

Стандартом для клинических лабораторий, в которых исследуют показатели гемостаза, считается использование одноразовых вакуумных систем (вакутейнеров и др.), содержащих 3,2% раствор цитрата натрия.

Их использование в значительной степени ускоряет, стандартизирует процедуру взятия крови и позволяет существенно снизить разброс результатов.

Если кровь для исследования показателей гемостаза берут через катетеры или системы с иглой-бабочкой, необходимо обеспечить полную герметичность системы и предварительное заполнение кровью всех «мертвых» объемов — просвета самого катетера, иглы и переходника, иначе возможны частичная потеря вакуума и неполное заполнение пробирки. Для предотвращения этого, а также попадания кусочков поврежденных тканей кровь для анализа показателей гемостаза не рекомендуют брать в первую вакуумную пробирку.

В условиях выраженного сгущения крови (полицитемии, дегидратации и др.) стандартное количество цитрата в вакуумных системах оказывается избыточным для уменьшенного объема плазмы.

При использовании вакуумных пробирок и уровне гематокрита у пациента выше 50% часть раствора цитрата из пробирки следует предварительно отсосать (например, с помощью инсулинового шприца).

Подлежащий удалению из стандартной вакуумной пробирки объем цитрата можно определить по формуле:

Y = (V / 10) × (9 × HCT – 405) / (595 – НСТ),

где Y — подлежащий удалению объем цитрата, мл; V — конечный объем пробирки для крови, мл; HCT — показатель гематокрита у пациента, %.

При низком (

Источник: https://www.clinlabs.com/preanalytic/preanaliticheskiy-etap-pri-issledovaniyah-gemostaza

ПОИСК

Кровь с цитратом что это
    Приготовление цитратной крови. Полученную из сердца или вены кровь сливают в пробирку с 5% раствором цитрата натрия (10 мл крови, 1 мл цитрата натрия). Цит-ратная кровь не свертывается. [c.

104]

    Для оценки смачивания поверхностей кровью используется краевой угол и угол наклона поверхности (см.

10), при котором происходило скатывание капли жидкости В качестве испытуемых поверхностей применяли гладкие полированные пластинки, на которые наносили капли цитратной крови, плазмы и сыворотки. Цитрат-ная кровь представляет собой раствор, содержащий 0,5 см цитрата на 10 смЗ крови.

При определении угла скатывания применяли капли жидкости одинаковой массы, равной примерно 0,15 г. Для сравнения изучали смачивание испытуемых поверхностей водой. Показатели, характеризующие смачивание твердых материалов водой и биологическими жидкостями, приведены в табл. XI, 6. [c.372]

    Подготовка материала. Промывные воды желудка (25 — 30 мл) при наличии в них комочков пищи растирают в стерильной ступке % этой пробы выдерживают при комнатной температуре в течение 1 ч для экстрагирования, а затем фильтруют через ватно-марлевый фильтр или центрифугируют при 3000 об/мин в течение 15—-20 мин. Цитратную кровь или сыворотку перед исследованием разводить не следует (ее вводят мышам только внутрибрюшинно). Испражнения больных (20 — 25 г) растирают в стерильной ступке с двойным объемом ИХН и выдерживают при комнатной температуре в течение 1 — 1,5 ч, а затем фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Аналогичным образом подготавливают экстракты из трупного материала. [c.196]

    Ускоренный метод бактериологической диагностики туберкулеза (метод микрокультур Прайса). Мокроту, гной, осадок мочи или другой материал наносят толстым слоем на несколько стерильных узких (1 см) предметных стекол.

Высушенный препарат берут стерильным пинцетом и погружают на 15 мин в 2%-ю серную кислоту, а затем — в стерильный раствор ИХН для промывания с целью удаления кислоты.

После этого препараты помещают во флаконы с цитратной кровью, стараясь полностью погрузить мазок с материалом в среду. [c.213]

    Хроматограмма цельной цитратной крови на бумаге состоит из равномерно окрашенного поля с более темной каемкой по периферии пятна. Такую хроматограмму можно получить как на бумаге, так и на тонких слоях порошка сорбента (окиси алюминия), равномерно распределенного на стекле.

Кровь, как известно, гасит люминесценцию. Поэтому нельзя получить люминесцентную хроматограмму крови, только на общем фоне слабой светло-фиолетовой люминесценции хроматографической бумаги получается темное, не люминесцирующее пятно.

Хроматограмма мочи, наоборот, дает яркую люминесценцию различно окрашенных зон. [c.343]

    Цитратная кровь и плазма смачивают перечисленные в табл. XI, 6 поверхности несколько хуже, чем вода. Сопоставление смачивания этих поверхностей сывороткой и водой показывает, что в одних случаях вода смачивает лучще, а в других хуже, чем сыворотка. [c.372]

    Липиды экстрагируют из 10 мл цитратной крови путем смешивания с 20 мл этанола с последующим прибавлением 20 мл эфира. Осадок еще раз обрабатывают 40 мл смеси этанола с эфиром (1 2). После удаления эфира остаток омыляют в течение 90 минут 20 мл 2 н.

раствора КОН с обратным холодильником, после чего разводят 20 мл воды и неомыляемую часть экстрагируют дважды 20 мл петролейного эфира. Жирные кислоты экстрагируют петролейным эфиром после подкисления НС1. Петролейный эфир удаляют, а жирные кислоты метилируют.

[c.53]

    Опыт повторяют с цитратной кровью. [c.170]

    Приготовление плазмы крови. Цитратную кровь ставят на 18—20 ч в холодильник или подвергают центрифугированию. В результате над осадком эритроцитов образуется прозрачный слой жидкости желтоватого цвета — плазмы. [c.104]

    Схема лабораторного исследования при диагностике лептоспирозов. I. Бактериоскопическое исследование, Морфологию лептоспир изучают в живом состоянии в темном поле. Бактериальными красителями они почти не окрашиваются.

Для микроскопического исследования цитратную кровь оставляют в пробирках при комнатной температуре на I—.172 ч. Верхний прозрачный слой отстоявшейся плазмы используют для приготовления микроскопических препаратов.

Значительно лучшие результаты дает микроскопия осадка сыворотки, полученного в результате центрифугирования при 10 ООО—12 ООО об/мин в течение часа. [c.292]

    Кровь кролика или барана смешивают с цитратом натрия в соотношении 10 мл крови на 2 мл 5% цитрата. Цитратную кровь разводят дистиллированной водой на 1 ч крови берут 2—4 ч дистиллированной стерильной воды. Среду разливают в стерильные пробирки по 5 мл. [c.382]

    Биологическое исследование. Для дифференциации возбудителей эпидемического и клещевого возвратного тифа 0,5—1,0 мл цитратной крови больного вводят подкожно морским свинкам. В случае эндемического (клещевого) тифа через 5 — 6 дней в крови у животных появляется большое количество боррелии в отли- [c.233]

    В. Н. Богдановой было проведено морфологическое исследование хроматограмм крови на бумаге. Для наших опытов мы пользовались цитратной кровью собак, в разведениях 1 10 и 1 25. Кровь брали из бедряной вены и поверхностной ушной вены. [c.343]

    Лимонная кислота широко используется в пишевой промышленности для приготовления лимонадов, различных кондитерских изделий и т. д.

В медицине лимонная кислота применяется для предотвращения свертывания крови или кровяной плазмы, предназначенной для переливания (цитратная кровь). Соли железа лимонной кислоты назначаются при лечении анемии.

Лимонная кислота является важным промежуточным продуктом обмена вешеств в организме человека и животных. [c.163]

    Na l, 0,85% раствор 3) приготовленная из цитратной крови взвесь эритроцитов, отмытых трижды охлажденным физиологическим раствором Na l до величины гематокрита 60% 4) обеззоленные фильтры (типа К,расная лента или Filtrak 338). [c.110]

Источник: https://www.chem21.info/info/588694/

ОСосудах
Добавить комментарий